產品簡介

天然蛋白L（Protein L）是從馬格努斯消化鏈球菌分離出來的能和免疫球蛋白特異性結合的蛋白質，分子量為36 KD。本產品使用的是基因改造后的蛋白L ，既保留了與抗體k鏈結合的特性，同時也不會影響抗體的抗原結合位點。與 protein A 和 Protein G 相比，Protein L 更能廣泛地結合各種來源及亞類的抗體，包括人、小鼠、大鼠、兔和雞，但不結合牛、山羊或綿羊來源的免疫球蛋白。

rProtein L Agarose Resin 4FF是用于分離和純化單克隆抗體的通用性親和層析介質，產品以高度交聯的瓊脂糖凝膠為基質，重組Protein L為配基，具有很高的物理化學穩定性，可以在相對較高的流速下進行抗體的純化，適用于工業客戶。利用本產品經過一步親和層析，可從腹水、血清和培養液等樣品中得到高純度的抗體，使用方便，應用廣泛。

本品rProtein L 4FF Chromatography Column，5 mL是一種裝填了rProtein L Agarose Resin 4FF的中壓預裝柱，規格5 mL，預裝柱具有標準接口，可以適配商品化的各類中壓色譜系統，如ÄKTA 等，方便客戶操作。

產品信息

產品性質

儲存條件

2~8℃保存，有效期2年。

需準備試劑

所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾除菌。

平衡/洗雜緩沖液：0.15 M NaCl，20 mM Na₂HPO₄，pH 7.0

洗脫緩沖液：0.1 M甘氨酸，pH 3.0

中和液：1 M Tris-HCl，pH 8.5

使用說明

【注】上柱之前要確保樣品溶液有合適的離子強度和pH值，可以用平衡/洗雜緩沖液對血清樣品、腹水或細胞培養液稀釋，或者樣品用平衡/洗雜緩沖液透析。樣品在上樣前最好用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾，減少雜質以防阻塞柱子。

1. 樣品純化（以Akta為例）

1）準備：將泵管道中注滿去離子水。去掉上塞子，將層析柱連接至色譜系統中。再折斷下口，將預裝柱下端口接到色譜系統中，并旋緊。

2）清洗：3-5倍柱體積去離子水沖洗層析柱中儲存液。

3）平衡：用5倍柱體積的平衡Buffer平衡層析柱，使填料處于與目的蛋白相同的緩沖體系下，起到保護蛋白的作用。

4）上樣：將樣品加到平衡好的層析柱中，推薦流速1-5 mL/min，保證目的蛋白與樹脂充分接觸，提高目的蛋白的回收率，收集流出液，待檢測。

【注】樣品的粘度增加使得即使上樣體積很少，也會導致層析柱很大的反壓。上樣量不要超過柱子的結合能力。大量的樣品體積也可能造成很大的反壓，使得進樣器更難使用。

5）洗雜：用10-15倍柱體積的洗雜Buffer進行清洗，直到紫外吸收達到一個穩定的基線，去除非特異性吸附的雜蛋白，收集洗雜液，待檢測。

6）洗脫：用洗脫Buffer 采用一步法或線性梯度洗脫。一步洗脫中，通常5倍柱體積洗脫液足夠將目的蛋白洗脫下來。也可以用一個小的梯度，例如20倍柱體積或更多，來分離不同結合強度的蛋白質。

7）清洗及保存：依次使用3倍柱體積的平衡Buffer和5倍柱體積的去離子水平衡填料，最后再用5倍柱體積的20%的乙醇平衡，然后保存在等體積的20%的乙醇中，置于4℃保存，防止填料被細菌污染。

2. SDS-PAGE檢測

將純化過程中得到的樣品（包括原始樣品、流出組分、洗雜及洗脫組分等）利用SDS-PAGE進行檢測，判定其純化效果。

3. 填料清洗

rProtein L 4FF Chromatography Column可以重復使用而無需再生，但隨著一些變性物質的沉淀和蛋白的聚集，往往造成流速和結合載量下降，影響柱子的性能，這時需對柱子進行清洗：

1）去除沉淀或變性物質

用2倍柱體積的6 M 鹽酸胍溶液進行清洗，然后立即用5倍柱體積的PBS，pH 7.4 清洗。

2）去除由于疏水性吸附造成的非特異吸附物質

用3-4倍柱體積的70%乙醇或2倍柱體積的1% Triton™ X-100清洗，然后立即用5倍柱體積的PBS，pH 7.4 清洗。

注意事項

1. 請勿冷凍保存本產品。

2. 所有操作過程中，樣本需要在4℃或冰上操作。

3. 本產品僅作科研用途。

4. 為了您的安全和健康，請穿實驗服并佩戴一次性手套操作。

Ver.CN20230412