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儀器網>產品中心> 翌圣生物科技(上海)股份有限公司>蛋白研究>蛋白純化>Magnify Q強陰離子交換預裝柱,5 mL

Magnify Q強陰離子交換預裝柱,5 mL

面議 (具體成交價以合同協議為準)
翌圣生物 2025-08-16 12:57:18
售全國 入駐:2年 等級:銀牌 營業執照已審核
同款產品:蛋白純化(155件)
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核心參數

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產品詳情:

 

離子交換主要包括強陽離子交換、弱陽離子交換、強陰離子交換和弱陰離子交換4種,廣泛用于生物制藥和生物工程下游蛋白質、核酸及多肽的分離純化。

Magnify Q是一種強陰離子交換層析介質,以表面接枝了葡聚糖的高剛性瓊脂糖為基架,具有高流速狀態下仍具有高的動態結合能力的優點,可以很好的提高工業下游工藝的生產效率。本品離子交換基團-N+(CH3)3

本品Magnify Q強陰離子交換預裝柱是Magnify Q強陰離子交換層析填料的中壓預裝柱,規格為5 mL,該預裝柱具有標準接口,可以適配商品化的各類中壓色譜系統,如ÄKTA等,方便客戶操作。

 

產品性質

基質

高剛性瓊脂糖微球

粒徑

45-165 µm

離子交換類型

強陰離子

載量

0.16-0.22 mmol Cl-/mL 介質

耐壓

0.3 MPa

推薦使用流速

<700 cm/h

pH范圍

2-12

儲存緩沖液

20%乙醇

柱子尺寸

1.6×2.5 cm(5 mL)

 

運輸和保存方法

冰袋運輸。2-30℃保存,有效期2年。

 

使用方法

1 緩沖液的準備

應選擇緩沖基團不與介質作用的緩沖鹽,平衡緩沖液宜采用低鹽和低 pH(通常低于目的物等電點 1 個 pH 單位)緩沖液以有利于目的物的結合,同時需要考慮目的物在緩沖液中的穩定性。洗脫緩沖液通常為在平衡緩沖液中加入高濃度鹽(如 1M NaCl)的緩沖液或高 pH 洗脫。所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾。

表1:陰離子交換緩沖液

pH 范圍

緩沖鹽

濃度(mM)

平衡離子

pKa(25℃)

4.3-5.3

N-Methylpiperazine

20

Cl-

4.75

4.8-5.8

Piperazine

20

Cl-或HCOO-

5.33

5.5-6.5

L-Histidine

20

Cl-

6.04

6.0-7.0

bis-Tris

20

Cl-

6.48

6.2-7.2

bis-Tris propane

20

Cl-

6.65

7.3-8.3

Triethanolamine

20

Cl-或CH3COO-

7.76

7.6-8.6

Tris

20

Cl-

8.07

8.0-9.0

N-Methyl-diethanolamine

20

SO42-

8.52

8.0-9.0

N-Methyl-diethanolamine

50

Cl-或CH3COO-

8.52

8.4-9.4

Diethanolamine

50

Cl-

8.88

8.4-9.4

Propane 1,3-Diamino

20

Cl-

8.88

8.6-9.6

bis-Tris propane

20

Cl-

9.10

9.0-10.0

Ethanolamine

20

Cl-

9.50

9.2-10.2

Piperazine

20

Cl-

9.73

10.0-11.0

Propane 1,3-Diamino

20

Cl-

10.55

10.6-11.6

Piperidine

20

Cl-

11.12

 

2 樣品準備

樣品在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾,減少雜質,提高蛋白純化效率和防止堵塞柱子。

3 樣品純化

1)將泵管道中注滿去離子水。去掉上塞子,將層析柱連接至色譜系統中。再折斷下口,將預裝柱接到色譜系統中,并旋緊。

2)用3-5倍柱體積的去離子水沖洗出存儲緩沖液。

3)使用至少5倍柱床體積的結合Buffer平衡色譜柱。

4)利用泵或注射器上樣。

【注】樣品的粘度增加使得即使上樣體積很少也會導致層析柱很大的反壓。上樣量不要超過柱子的結合能力。大量的樣品體積也可能造成很大的反壓,使得進樣器更難使用。

5)用洗雜Buffer沖洗柱子,直到紫外吸收達到一個穩定的基線(一般至少10-15個柱體積)。

6)用洗脫Buffer采用一步法或線性梯度洗脫。一步洗脫中,通常5倍柱體積洗脫液就足夠了。可以用一個小的梯度,例如20倍柱體積或更多,來分離不同結合強度的蛋白質。

5 填料清洗

離子交換填料每次使用后可以用1M NaCl甚至更高離子強度溶液或高pH溶液清洗,然后用至少5倍柱體積的Buffer進行平衡至離子強度或pH值穩定。

CIP(Cleaning In Place)清洗

離子交換填料可以重復使用而無需再生,但隨著非特異性結合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和結合載量都下降,這時可按照下面方法對填料進行清洗。

1)去除一些沉淀或變性物質

用2倍柱體積的1 M NaOH溶液進行清洗,然后立即用5倍柱體積的PBS, pH7.4清洗。

2)去除一些疏水性吸附造成的非特異性吸附物質

用3-4倍柱體積的70%乙醇或3-4倍柱體積的1% Triton™ X-100清洗,然后立即用5倍柱體積的PBS, pH7.4清洗。

3)去除一些離子鍵結合物質

用3-4倍柱體積的2 M NaCl清洗,然后立即用5倍柱體積的PBS, pH 7.4清洗。

 

注意事項

1)請勿冷凍保存本產品。

2)為了得到良好的分離效果,避免緩沖液與層析柱有太大溫差變化。

3)層析柱可以放在層析冷柜中使用,但是需要適當降低流速。

4)為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。

5本產品僅作科研用途!

 

附表 問題及解決方案

問題

可能原因

推薦解決方案

柱子反壓過高

填料被堵塞

按照【填料清洗】部分對填料進行清洗。

樣品中含有微小的固體顆粒,建議使用前用0.22 µm或0.45   µm濾膜過濾。

洗脫樣品較雜

填料重復多次使用

按照【填料清洗】部分對填料進行清洗或更換新填料。

平衡不充分

增加平衡液體積,確保填料充分平衡/洗雜。

 

 

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